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大腸桿菌感受態細胞的原理

點擊次數:13344   發布時間:2013/4/22 10:43:02

大腸桿菌感受態細胞的原理

原理:

轉化(Transformation ):將外源DNA 分子引入受體細菌,使之獲得新的遺傳性狀。

受體細菌一般是限制修飾系統缺陷的變異株,不含限制性內切酶 和甲基化酶的突變體(R-,M-),可以容忍外源DNA 分子進入體內并穩定地遺傳給后代。受體細胞經過一些特殊方法,如電擊或CaCl2 、RbCl/KCl等化學試劑的處理后,細胞膜的通透性增高,成為感受態細胞(Compenent cells),使外源DNA 分子得以進入。

目前常用的感受態細胞制備方法有CaCl2 和RbCl/KCl法,RbCl/KCl法制備的感受態細胞轉化效率較高,但CaCl2 法簡便易行,且其轉化效率完全可以滿足一般實驗的要求,制備出的感受態細胞暫時不用時,可加入無菌甘油至總體積15%,于-70℃保存半年之久,因此CaCl2 法為使用更廣泛。

準備:

1、配制0.05mol/L CaCl2 -15%甘油混合溶液,高溫高壓滅菌;

注: CaCl2 必須為分析純以上。

2、實驗中所需的所有試管 、培養瓶 、離心管 等均要用去離子水徹底清洗干凈,高溫高壓滅菌;

注: 有制備感受態細菌專用的一套實驗器材。

3、受體菌的培養:從非選擇性LB平板上挑取E.coli單菌落,接種于3-5ml LB液體培養基中,37℃振蕩培養過夜至對數生長中后期。將該菌懸液以1:100的比例接種于50~100ml LB液體培養基中,37℃振蕩培養2.5小時至OD600 =0.5。注:培養時間不宜超過2.5小時,否則不能達到轉化效率。

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